进行细菌的药敏试验(进行细菌的药敏试验研究应选择哪一期的细菌)

药敏试验是确定细菌对不同抗生素敏感性的检测。它对于指导抗生素治疗至关重要，以确保使用最有效的抗生素来治疗感染。

选择进行药敏试验的细菌期

进行药敏试验时，选择正确的细菌期非常重要。通常，在急性感染期进行药敏试验是最合适的，这是因为：

• 急性感染期细菌数量较大，更容易检测。
• 急性感染期细菌对抗生素的敏感性通常与慢性感染期一致。

在以下情况下，也可能需要在慢性感染期进行药敏试验：

• 感染反复发作
• 感染没有对初始抗生素治疗做出反应
• 怀疑存在耐药菌

药敏试验方法

药敏试验可以通过以下几种方法进行：

• 纸片扩散法： 将抗生素浸泡的纸片放置在接种有细菌的培养基上，并观察抗生素扩散区域周围细菌生长的抑制情况。
• 微量稀释法： 将细菌与不同浓度的抗生素培养，并观察抑菌最小浓度（MIC）。
• 凝胶扩散法： 将抗生素扩散到凝胶中，并观察细菌生长的抑制情况。

药敏试验的结果通常以“敏感”、“中等敏感”或“耐药”表示。敏感表示细菌对抗生素高度敏感，而耐药表示细菌对抗生素具有抵抗力。

药敏试验的临床意义

药敏试验对于优化抗生素治疗有以下临床意义：

• 选择有效抗生素： 识别对感染细菌有效的抗生素，避免使用无效或耐药性抗生素。
• 预防抗生素耐药性： 通过仅使用对细菌有效的抗生素来帮助预防抗生素耐药性的发展。
• 指导治疗持续时间： 药敏试验结果可以帮助确定抗生素治疗所需的持续时间。
• 监测抗菌治疗的反应： 通过跟踪随着时间的推移而变化的药敏试验结果，可以监测抗菌治疗的反应并根据需要调整治疗方案。

结论

细菌药敏试验对于指导抗生素治疗至关重要。选择正确的细菌期进行药敏试验对于获取准确的结果和优化治疗效果至关重要。通过适当的药敏试验，可以提高抗菌治疗的有效性，预防抗生素耐药性，并改善患者预后。

---

MRSA的耐药机制是什么?

MRSA、MRSE的知识介绍MRSA——耐甲氧西林金黄色葡萄球菌MRSE——耐甲氧西林表皮葡萄球菌1．什么是耐甲氧西林?“耐甲氧西林”是指对所有耐酶青霉素（甲氧西林、奈夫西林、苯唑西林、氯唑西林和双氯西林）耐药而且对所有β—内酰胺类抗生素耐药,包括所有头孢菌素、含酶抑制剂的头孢菌素、亚胺培南.另外,甲氧西林耐药的出现通常伴随着四环素、红霉素、克林霉素和氨基糖甙类抗生素的耐药.所以现在临床医生和微生物学家把MRSA/MRSE列为“多重耐药葡萄球菌”.2．怎样识别MRSA/MRSE?NCCLS（美国国家临床实验室标准化委员会）1999年标准化文件规定,药敏实验中葡萄球菌如果对苯唑西林耐药即为MRSA/MRSE.这些菌株对目前所有的β—内酰胺类抗生素耐药.3．MRSA/MRSE是如何传播的?如何预防和控制流行?关于MRSA/MRSE传播机制有几个说法：直接接触、空气传播和环境污染.然而在大多数爆发流行中的主要传播方式是通过人的手从一个病人传播到另一个病人.医护人员的手是重要传播途径/MRSE携带者同样也在MRSA/MRSE的传播中扮演着一个角色,例如,气管切开、烧伤和大面积伤口感染MRSA/MRSE的病人携带者有大量的细菌,同时有较大的可能性造成细菌扩散.预防和控制流行措施：（1）医护人员在接触下一个病人前应认真洗手,这是非常有效而难以落实的预防措施；（2）及时有效地应用万古霉素治疗感染；（3）患者病愈后及早出院.4．MRSA、MRSE感染如何选择抗生素进行治疗?目前对MRSA、MRSE和肠球菌属的严重感染,万古霉素（稳可信）是治疗的首要选择.稳可信是FDA唯一批准应用于治疗MRSA、MRSE感染的抗生素.（二）G-：1、ESBLS（产超广谱酶的革兰氏阴性杆菌）①多见于G-杆菌的肠杆菌科,肺炎克雷伯菌最常见.②加入β-内酰胺酶类药物耐药,如青霉素类,I、Ⅱ、Ⅲ代头孢菌素,氨曲南耐药,敏感的有头霉素,碳青霉烯类,β内酰胺/β内酰胺酶抑制剂,阿米卡星.③在体外试验中,该酶使Ⅲ代头孢菌素,氨曲南的抑菌环缩小,但并不一定在耐药范围.④加入β-内酰酶抑制剂克拉维酸后,可使抑菌环扩大.⑤由质粒介导的,通常由β-内酰胺酶基因（TEM-1,TEM-2,SHV-1）突变而来.（超广谱β-内酰胺酶(ESBL)是能水解头孢噻肟、头孢他啶、头孢曲松等及氨曲南等单环类抗生素,并介导细菌对这些抗生素耐药的β-内酰胺酶.肺炎克雷伯菌是最常见的产ESBL菌株,常引起医院感染暴发流行.产ESBL菌株流行机制很复杂,可同时存在流行菌株的扩散以及质粒或耐药基因的转移.目前的研究表明,肺炎克雷伯菌产生的ESBL主要为TEM和SHV类β-内酰胺酶.以往ESBL主要存在于常见肠内菌如：克雷伯杆菌、大肠杆菌.但现在连沙门(氏)菌、变形杆菌属、柠檬酸杆菌、摩根氏杆菌、 黏质沙雷氏菌、赤痢志贺氏杆菌、绿脓杆菌及不动杆菌也都有发现.此外,这些细菌不只具有一个ESBL基因,有时同一菌株可具有数个ESBL基因.目前ESBL被分为9类：TEM,SHV ,OXA,CTX-M (对cefotaximes水解能力很强),PER,VEB,GES,TLA, BES.）超广谱β—内酰胺酶（ESBLs）知识介绍1．什么是ESBLs?ESBLs是英文Extended—Spectyumβ—Lactamase缩写,中文意思是超广谱β—内酰胺酶,属质粒介导,它是当前抗生素出现的新的耐药趋势之一.2．产ESBLs菌株的耐药特点?如果临床出现产ESBLs菌株,则对第三代头孢菌素（它们是头孢噻肟、头孢他啶、头孢哌酮、头孢曲松等）耐药,及对单环酰胺类抗生素（氨曲南）耐药在实验室有一专门的检测方法,如果病人的药敏报告单已注明为产ESBLs菌株,则表明已经实验室确证.如果病人药敏报告单未注明为产ESBLs菌株,三代头孢菌素和单环酰胺类抗生素中有一种MIC≥2ug/ml,或符合CAZ≤22mm、ATM≤27mm、CTX≤27mm、CRO≤25mm其中一个,则提示菌株可能产超广谱β—内酰胺酶,这种情况下,即使实验室报告为敏感的第三代头孢菌素和单环酰胺类抗生素,在临床也不推荐使用.3．哪些细菌容易产生ESBLs?目前大肠埃希氏菌（大肠杆菌）、肺炎克雷伯氏菌是最常见ESBLs菌株的细菌,其次,阴沟肠杆菌、粘质沙雷氏菌、弗劳地枸橼酸菌、铜绿假单胞菌也可出现产ESBLs菌株的细菌.4．细菌为什么会产生β—内酰胺酶?由于菌株产生β—内酰胺酶水解青霉素G和氨苄青霉素.细菌所产生的重要抗生素灭活酶主要有β—内酰胺酶和氨基糖类抗生素钝化酶.β—内酰胺酶能裂解青霉素族和头孢菌素族抗生素的基本结构β—内酰胺环,从而使其丧失抗菌活性.大部分金黄色葡萄球菌,部分流感嗜血杆菌、淋病奈瑟氏菌、革兰氏阴性厌氧菌和少数肺炎链球菌能产生β—内酰胺酶从而对青霉素G和氨苄青霉素等耐药.5．促使ESBLs出现和传播的因素及临床预防?应用第三代头孢菌素治疗是导致产ESBLs菌株出现及传播的主要因素,此外,尚有其它因素.若临床出现产ESBLs菌株,会在病人和医院之间及不同菌株之间相互传播,导致临床高死亡率及高比率持续性定殖,应充分引起注意.6．产ESBLs菌株如何选择抗生素进行治疗?一旦确定为产ESBLs菌株,应立即停止使用第三代头孢菌素（头孢噻肟、头孢他啶、头孢哌酮、头孢曲松等）及单环酰胺类抗生素（氨曲南）进行治疗.对付产ESBLs菌株,最有效的抗生素为碳青霉烯类（泰能）,其次,头孢西丁及含酶抑制剂的复合剂、氨基糖类等.2、AmpC（产AmpC酶的革兰氏阴性杆菌） ①AmpC酶是染色体介导的,多存在于G-杆菌的肠杆菌属中,尤其是阴沟肠杆菌,产气肠杆菌,弗L劳地枸缘酸杆菌、粘质沙雷菌中.②对头霉素,I、II、III代头孢,青霉素、氨曲南、β-内酰胺/β-内酰胺酶抑制剂耐药,对碳青霉烯类敏感.③AmpC酶与ESBL的区别：AmpC酶与ESBL都对碳青霉烯类敏感.但ESBLS对头霉素和β-内酰胺/β-内胺酶抑制剂也敏感,对4代头孢大多数不敏感,而AmpC酶对头霉素和β-内酰胺/β-内酰胺酶抑制剂不敏感,对4代头孢敏感.（这类酶与超广谱β-内酰胺酶(ESBL)的区别在于克拉维酸等酶抑制剂对前者并无大的影响,而对后者往往能抑制其活力.前者对头孢西丁耐药,而后者相反.1型β-内酰胺酶可分染色体介导和质粒介导,通常具有可诱导性质,一旦形成去阻遏表达则可持续高产此种β-内酰胺酶.1989年Bauernfeid等首次报道在汉城发现的一株革兰阴性菌的1 型β-内酰胺酶基因位于可转移的质粒上(质粒AmpC),这种新的耐药表型因其较快的传播速度和较强的耐药性,开始逐渐引起人们的关注,在以每年发现1～2个新酶的速度持续增加.同时在临床常规药敏检测中发现,质粒AmpC对β-内酰胺类药物的表型有时并不一定耐药.所以,对于质粒介导AmpC酶的实验室检测显得尤为重要.目前,头孢西丁三维试验能检测AmpC酶.）AmpC酶的耐药机制：AmpC酶是由染色体介导的β内酰胺酶,属于Bush分类1组（C类）,在自然状态下细菌产生此种酶的量很少,但某些细菌如阴沟肠杆菌、弗氏枸橼酸杆菌等在β内酰胺类抗生素（尤其是头孢西叮、亚胺配能和克拉维酸）的作用下可大量诱导AmpC酶的产生,而且其调控基因的突变率很高,突变后将使酶持续大量产生,导致细菌对除碳青酶烯类之外的所有β内酰胺类抗生素耐药酶的诱导机制很复杂,共涉及四个连续基因,即ampC、ampR、ampD和ampG,并与细菌细胞壁肽聚糖的循环合成有关.近年来此耐药基因已开始向质粒扩散,给临床带来更严峻的挑战.近年也有少数质粒介导的AmpC酶在不同国家被发现酶属于Class C类酶又称头孢菌素酶,它是Bush1类β内酰胺酶的典型代表,能水解青霉素类,一代、二代和三代头孢菌素类和单环类,不被克拉维酸抑制,体外试验尚能诱导细菌产AmpC酶,舒巴坦和他唑巴坦的抑制效果非常有限,但硼酸类化合物和氯唑西林体外有较好的抑制作用酶可分为诱导型,去阻遏持续高产型和质粒型.绝大多数革兰阴性杆菌都具有产生AmpC酶的能力,通常情况产酶量很少,在临床上并不形成耐药,但一旦细菌阻遏AmpC酶产生的基因发生突变,细菌就可持续高产AmpC酶,出现对绝大多数β内酰胺抗生素的耐药.此外还应注意到在传统认为只产AmpC酶的肠杆菌属细菌中,ESBL可能并不少见,细菌一旦同时具有高产AmpC酶及产ESBL的能力,其耐药性将极其严重.诱导型AmpC酶：当细菌未接触有诱导力的β内酰胺类抗生素时,染色体的ampC基因被基因阻遏子抑制,产酶处于基线水平.当使用有诱导力的抗生素治疗时,产生了暂时的去阻遏现象基因自由表达,使得细菌暂时产生过量的β内酰胺酶.一旦去除抗生素,大多数情况下产酶水平水逐渐恢复到基线水平.临床应用β内酰胺类抗生素阻断了细菌细胞壁五肽交朕桥连接,引起肽聚糖合成紊乱,产生大量肽聚糖片断,当革兰阴性菌周质间隙或胞浆中肽聚糖片段的量超过AmpD蛋白循环利用能力时,感受器或跨膜转运系统AmpG蛋白可传递或摄取肽聚肽聚糖片段的刺激信号,使AmpR蛋白形成激活子,激活ampC基因转录及ampR基因自我转录,诱导细菌产生AmpC酶.大肠埃希菌的AmpC酶低水平表达,它缺少ampR基因而不能诱导产酶[21].去阻遏持续高产AmpC酶：在产诱导型AmpC酶的革兰阴性菌中,可发生较高频率的调节基因自发突变,调节基因的作用受到抑制[22],AmpD调节基因突变产生有缺陷的AmpD蛋白,使菌株去阻遏持续高产AmpC酶,亦可产生高诱导型或温度敏感型AmpC酶[23].质粒型AmpC酶：20世纪80年代以前,AmpC酶多数报道为染色体型,20世纪80年代后有许多文献证实大量使用三代头孢菌素与AmpC酶的产生有密切关系.质粒型AmpC酶的出现与头霉菌素（如头孢西丁和头孢替坦）,加β内酰胺酶抑制剂复合抗生素使用量增多产生的选择压力有一定的关系,从分子大小、结构、等电点、生化特性等非常类似于染色体酶,这种酶较超广谱β内酰胺酶有更广泛的耐药谱,又不能酶抑制剂类破坏[24、25].1988年,Papanicolaou等首次在肺炎克雷伯菌的质粒上捕获到头孢菌素酶,这种耐药性可以转移,并与阴沟肠杆菌ampC基因同源.1994年,在弗劳地枸橼酸杆菌中发现携带头孢菌素酶的耐药质粒,可以转移至大肠埃希菌和肺炎克雷伯菌中,并编码产生AmpC酶,形成质粒型AmpC酶,增加了传播力.目前质粒介导的AmpC酶种类也在不断地增加,现已发现了26种质粒AmpC酶[25].随着20世纪80年代早期以来新的β内酰胺酶类抗生素的广泛使用,产AmpC酶的革兰阴性杆菌已逐渐成为医院感染的流行菌[4].1978年首次报道了应用新的β内酰胺类抗生素过程中筛选出产生高水平染色体酶的变异株[26],它几乎对当前所有的β内酰胺类抗生素（除亚胺培南外）耐药.这种耐药性已在肠杆菌属、弗劳地枸橼酸杆菌、摩根菌属、粘质沙雷菌、铜绿假单胞菌等临床分离株中报道,并涉及每一种新的头孢菌素类、部分青霉素类和氨曲南[27].这类报道大多数是肠杆菌属细菌引起的感染.在美国,肠杆菌属造成的医院感染菌血症占5％至7％；在ICU,分别占常见呼吸道感染的第三位,尿路感染第五位,手术伤口感染第四位[28].其中最常见是阴沟肠杆菌和产所肠杆菌感染,特别当存在以下危险因素时,如长期住院（尤其ICU）,严重的基础疾病,各种原因的免疫抑制、高龄、导管装置、抗生素使用等.肠杆菌属感染的爆发流行主要发生在大量使用头孢菌素和其他广谱β内酰胺类抗生素的肿瘤病房或新生儿、心脏外科的ICU.造成感染爆发流行的多种细菌来源于病人自身的肠道菌群.正是由于使用原有的或新的头孢菌素而形成的选择性压力,肠杆菌属细菌逐渐成为肠道菌中的优势菌,最终造成许多病人感染.不仅产AmpC酶的肠杆菌科细菌在医院的流行呈上升趋势,而且这些细菌形成多重耐药的趋势也不断上升.1991年,Chow等[27]对129例成年人研究发现,在肠杆菌属细菌所致的菌血症中,使用第三代头孢菌素治疗比使用氨基糖苷类或其他β内酰胺类治疗更容易导致多重耐药性的产生.这主要与新的头孢菌素的使用增加,以及医院的规模和病人数密切相关.但这种趋势是可以改变的,当减少或终止头孢菌素类的使用时,可减少产诱导酶的肠杆菌科细菌的流行和耐药菌株的出现[27].

细菌药物敏感性的测定及保存菌种多选用细菌生长繁殖的哪个期

对数生长期。 在对数生长期，细菌处于快速生长和繁殖的阶段，代谢活性较高，对外界环境的适应能力也较强，细菌在对数生长期内对抗生素的敏感性较高，能够更好地反映其对抗生素的抑制效果。 此外，选择对数生长期的细菌进行保存可以确保菌种具有较高的生存率和较好的稳定性，有利于后续的实验和应用。

什么是进行药物敏感试验的基础

1 概述

测定细菌在体外抗菌药物敏感性（以下称药敏试验）的试验方法很多。

绝大多数临床实验室以琼脂扩散法作为常规方法测定常见的快速生长的病原菌。

本文介绍的是标准纸片扩散法。

本文提出的一系列建议有助于药敏试验的标准化。

具体地叙述了现行推荐方法的操作步骤，及其适应性和局限性。

本文还重温了国际协作研究会（ICS）的有关建议和食品药物管理局（FDA）的有关规定，并采纳了其中的有关章节。

只根据是否出现抑菌环而不考虑其大小来判断细菌对抗菌药物敏感性的试验方法，结果是不准确的。

纸片扩散法试验必须遵循标准的方法学原理，并根据抑菌环与最低抑菌浓度的相关性，并结合临床上已知敏感或耐药菌株的状况进行标准化，结果才能可靠。

要得到可靠结果，必须严格地按照本文的方法进行操作。

美国临床实验室标准化委员会（NCCLS）下设的纸片扩散法药敏试验分委员会推荐的标准方法，以Bauer等介绍的方法为基础，是目前叙述最完整的试验方法。

其中的解释标准是综合临床和实验室的数据发展而来，并得到证实。

本文介绍的是现行纸片扩散法药敏试验的操作、质量控制以及解释标准。

当发现新问题并有所改进时，将并入新版本，以非正式文件补充发布。

纸片法抗菌药物敏感实验操作标准

2 做药敏试验的指证

任何细菌引起的感染均需要治疗。

如果依细菌的种类不能预知其敏感性，就应做药敏试验。

通常，鉴定和药敏试验是同时进行的。

当致病菌属于一种对一般常用抗菌药物耐药的细菌，最需要做药敏试验。

细菌耐药机制包括：产生灭活药物的酶，药物耙位改变，或药物进入细胞的方式发生变化。

有些细菌的抗菌药物敏感性可以预知。

当感染由一种对某高效抗菌药物敏感的细菌引起时，就不必做药敏试验（如，化脓性链球菌对青霉素专性敏感）。

但对青霉素过敏的病人，分离出的化脓性链球菌也许要测一下红霉素和四环素的敏感性，以便发现有无耐药性。

细菌耐药性流行病学研究及新抗菌药物的研究也需要做药敏试验。

做药敏试验，应从分离平板上挑选各种疑为致病菌的单个菌落，同时做菌种鉴定。

不同菌种不可在同一平板上做混合细菌药敏试验。

一般避免用临床标本（如无菌体液和尿液）直接做药敏，除非临床上急需且革兰氏染色只见到单一菌种，但随后应再以标准方法重做。

对感染性质不同，标本中混有浑浊细菌或正常菌群的情况，其中的细菌也许与感染治疗关系不大，常不必做药敏，不然反会招致错误的引导。

3 常规测定药物的选择

要测定和报告给哪些药物，须与感染科医生、医院的药品委员会及感染控制委员会协商，然后由实验室制定最合适的方案。

表1和表1A列出了治疗各类细菌感染有效的药物，其体外药敏试验结果也有助于感染的控制及流行病学研究。

3.1 常规报告

表1和表1A列出的抗菌药物是我们目前认为比较适合的。

选药时做了多方面考虑，包括微生物学、临床药理学因素及美国FDA认可的临床适用性和疗效。

为了避免误导，给临床医生的报告应只包括治疗上有用的药物，如表1和表1A。

根据情况需要，可在此基础上增减。

为了积累分类学和流行病学资料也可选择用于治疗以外的药物，但结果仅限于实验室内的感染控制医生或医院感染流行学专家用，不可报给临床医生。

3.2 使用认可的名称

所有抗菌药物均采用官方认可的名称以避免混淆。

为了强调大多数现用抗生素之间的关系，按药物的种类分组如下：

3.2.1 β－内酰胺类 所有β－内酰胺类药物都具有相同的中央β－内酰胺环结构，并以抑制细胞壁合成为主要作用机理。

β－内酰胺环上的取代环结构或取代基决定了药物属于青霉素类、头孢烯类、碳头孢烯类、碳青霉烯类或单环类。

3.2.1.1 青霉素类 青霉素主要针对不产β－内酰胺酶的革兰氏阳性菌和某些娇嫩革兰氏阴性菌。

酰胺类青霉素（氨苄西林和阿莫西林）和酰脲基青霉素（美洛西林和哌拉西林）对革兰氏阴性菌的抗菌范围更大，对很多假单胞菌有效。

耐青霉素酶的青霉素（氯唑西林、双氯西林、假氧西林、乙氧西林和苯唑西林）主要针对革兰氏阳性菌如产青霉素酶的葡萄球菌。

3.2.1.2 β－内酰胺类/β－内酰胺酶抑制合剂类 这类药物由一种青霉素和一种抗菌活性小但可抑制某些β－内酰胺酶作用的物质组成合剂。

目前使用的抑制剂有三种：棒酸、舒巴坦和他唑巴坦。

合剂的抗菌效果不可仅靠合剂中青霉素药敏试验的结果预测。

3.2.1.3 头孢烯类（包括头孢菌素类）

3.2.1.4 碳青霉烯类 碳青霉烯类药物在结构上与青霉素稍有不同，对β－内酰胺酶有更强抗水解力，对革兰氏阳性和阴性菌的抗菌谱更广。

3.2.1.5 单环类 单环类结构独特，仅对须氧革兰氏阴性菌有作用。

目前，氨曲南是美国FDA唯一通过的单环类药物。

3.2.2 粘肽类 粘肽类化学结构复杂，主要抑制细胞壁合成，但作用位点不同于β－内酰胺类。

这类药物主要针对革兰氏阳性菌。

万古霉素主要用于治疗对青霉素过敏病人的革兰氏阳性菌感染。

还用于治疗β－内酰胺类药物耐药的革兰氏阳性菌，如MSRA和某些肠球菌。

3.2.3 氨基糖苷类 这类药物结构类似，在核糖体水平抑制蛋白质合成。

由于对氨基糖苷灭活酶的耐受性的差异，不同药物的抗菌谱也有所不同。

此类药物主要治疗须氧革兰氏阳性菌感染，或主要作用于细胞壁的抗生素联合治疗某些耐药革兰氏阳性菌，如肠球菌。

3.2.4 大环内脂类 此类药物结构相似，在核糖体水平抑制蛋白质的合成。

此类中仅有几种现仍用于测试革兰氏阳性菌或柔嫩革兰氏阳性菌。

3.2.5 四环素类 此类药物在核糖体水平抑制某些革兰氏阳性和阴性菌的蛋白质合成。

此类药物极为相似，少有例外，常规测四环素即可。

3.2.6 喹诺酮类 此类药物结构相似，主要是抑制许多革兰氏阳性菌和阴性菌的DNA螺旋酶活性。

各药的抗菌谱不完全一致，应分别测定。

3.2.7 磺胺类和甲氧苄氨嘧啶（TMP） 此类药物包括几种化疗制剂，抗菌谱相同，可抑制细菌的叶酸代谢。

磺胺甲基异恶唑最常用，主要用于治疗尿路感染。

药敏试验可选此药。

磺胺甲基异恶唑常与TMP合用，它们分别在革兰氏阳性菌和阴性菌叶酸代谢的两个步骤中起抑制作用。

3.2.8 其他药物 氯霉素、克拉霉素和利福平均是抑制蛋白质合成，但彼此在结构上没有关系，均需作体外测试。

呋喃妥因在核糖体水平抑制蛋白质合成，此药在体液中浓度极低，通常只用于泌尿系感染。

3.3 选药指南

为使常规药敏试验合理，应限制测定药物的数量。

表1和表1A足以满足大多数临床实验室常规工作的需要。

该表按特定菌或菌群分若干组，将各种抗生素择优次序排列，供常规实验室选择。

表中每格列的一组相似抗生素，疗效相似，不必重复选择。

以“或”相连的药物，抗菌谱类似，表现为交叉耐药。

因此，每格（一类或相关组）中的药物只需选择一种。

一般，每种药物的药敏结果必须经过测定后才能报告，个别情况可以根据另外的药物的结果推测（如葡萄球菌对头孢类的结果可根据苯唑西林的结果推测）。

选择的药物应与医院常用药物吻合。

3.4 常规报告和选择性报告的原则

如表1和表1A所列，属于A组的药物，是常规首选药物，对每一特定的菌类应做相应的报告。

B组包括了临床上重要的药物，特别是对院内感染，应该作为首选药。

但是，报告是有条件的：只有当A组中同类药物不敏感时才报告。

其他情况还有：特定的标本（如CSF中分离的肠杆菌应测三代头孢菌素，或泌尿系菌株测TMP/SMZ）；混合感染；多部位感染；药物敏感，明显副作用，或对A组药物治疗失败；为控制感染收集流行病学指标等。

C组包括替代或后备药物，其适用的情况包括：治疗某些地方或流行性疾病，或对首选药物（特别是同类药，如β－内酰胺类或氨基糖苷类药物）多重耐药的菌株；治疗对首选药物过敏的病人；治疗不常见的菌种（如氯霉素治疗沙门氏菌或某些假单胞菌）以及为控制感染收集流行病学资料（如产杆菌测氯霉素和卡那霉素）的等。

D组包括仅限于泌尿系感染使用的药物（如呋喃妥因和有机酸类），其他部位感染的细菌无需测定。

每个实验室都应决定哪些药物（表1和表1A）作为常规（A组）报告，哪些只是作为选择性报告（B组）报告，这需要与传染科医生、药品委员会及医院感染控制委员会成员共同商讨。

选择性报告须有助于对该报告的理解，并促进降低由于滥用抗菌药物所造成的耐药菌增加。

虽然B组药物的试验结果不作为常规报告，但是，一旦临床需要应该及时提供，或者对特定的标本作为常规报告。

异常耐药应该报告，如对二线药物耐药但对一线药物敏感的现象。

4.0 试剂

4.1 Mueller-Hinton琼脂

在现有的许多培养基中，我们认为Mueller-Hinton琼脂最适合于常规敏感试验，理由是：（1）产品批间试验结果重复性好；（2）磺胺、甲氧苄氨嘧啶、四环素的抑制物含量低；（3）绝大多数致病菌生长较好；（4）大量有关敏感试验的数据是由此培养基得出的。

尽管Mueller-Hinton琼脂通常是可靠的，但是偶然产品也有批间差。

如果一批培养基不能很好地保证细菌生长，抑菌环则增大，超出质控范围，造成错误结果。

只有按NCCLS M6-P做过试验并符合规定的培养基才能使用。

4.1.1 制备Mueller-Hinton琼脂

制备Mueller-Hinton琼脂的步骤如下：（1）按产品说明用干粉培养基制备；（2）高压灭菌后立即放40－50℃水浴；（3）平皿置水平台上，新制备的培养基待凉后倒平板，琼脂厚度为4mm。

内径14cm的平皿需要培养基约60－70ml，内径9cm平皿约需25－30ml。

玻璃或塑料平皿均可使用，但平皿底应平坦；（4）待平板冷至室温，留下当日使用的，其他放入冰箱（2－8℃）保存；（5）平板许在7日内用完。

如用塑料袋包裹，水份不蒸发的可适当延长使用期。

过期培养基须以质控菌株按4.3节介绍的方法测定，合格者方可使用；（6）每批制备的平板，应抽样30－35℃ 24小时以上，检查是否无菌。

抽样的平板不可再用。

4.1.2 pH值

每批Mueller-Hinton琼脂，制备时应检查pH值。

检查方法依实验室所具备的设备条件。

培养基的pH值室温下应为7.2-7.4，测pH值应在琼脂凝固后进行。

如果pH值偏低，某些药的活性会下降（如氨基糖苷类和大环内脂类），另一些药的活性可能会增强（如青霉素类）；如果pH值偏高，效果相反。

pH值测定方法有：（1）将pH电极浸入融化的琼脂培养基中；（2）琼脂放入烧杯中融化，然后使其凝固在pH电极上；（3）使用平面电极。

4.1.3 水份

使用前，琼脂平板表面如有水份，须放恒温箱（35℃），恒温箱门半开，使水份蒸发（10－30分钟）。

琼脂表面应潮湿，但不应有水珠。

培养时，平皿盖上也不应有水珠。

4.1.4 胸腺嘧啶核苷和胸腺嘧啶的作用

如培养基含有过量的胸腺嘧啶核苷和胸腺嘧啶，磺胺药和甲氧苄氨嘧啶的活力被抵消，则抑菌环较小或不清楚，甚至无抑菌环，导致假耐药的报告。

购买培养基时，应注意挑选无胸腺嘧啶核苷的Mueller-Hinton琼脂。

可以用标准的质控菌株粪肠球菌ATCC或测试复方磺胺的纸片，评价新批号的Mueller-Hinton琼脂。

培养基上出现直径大于20mm的抑菌环为合格。

不合格的培养基上不出现抑菌环、环内有细菌生长或抑菌环小于20mm。

4.1.5 二价离子的影响

二价离子，主要是镁和钙离子，影响四环素、多粘菌素、氨基糖苷类药物对绿脓假单胞菌的测定结果。

阳离子过量抑菌环变小，浓度过低抑菌环增大。

锌离子可影响羧基青霉素的结果。

每批培养基都应测试，看是否符合表3的质量控制要求。

应细致观察质控菌株的测定结果，观察是否有由培养基引起的误差。

4.1.6 被测菌株生长不好的解决办法

只有能够在未强化的Mueller-Hinton琼脂培养基上生长良好的须氧菌或兼性厌氧菌才能在此培养基上做药敏试验。

某些娇嫩细菌，如嗜血杆菌、淋病奈瑟氏菌、肺炎链球菌、草绿色链球菌、β溶血链球菌在未强化的Mueller-Hinton琼脂培养基上生长不良。

这类细菌，需用经强化或另外的培养基，具体做法见第六节。

（另见表4）

4.2 药敏纸片的保存

药敏纸片应注意保存在干燥环境。

按下法保存：（1）在8℃以下保存，或－14℃以下冷冻保存。

β－内酰胺类药的纸片应密封冷冻保存，仅取少量作为日常使用，在冰箱里保存约一周。

有些不稳定的抗生素（如头孢拉定、棒酸合剂）须冷冻保存，用时取出；（2）纸片应在使用前1－2小时从冰箱取出，暖至室温再打开，以避免出现冷凝水；（3）纸片启封后应放入可密封的有干燥剂的容器中；（4）纸片只能在有效期内使用，过期应弃去。

4.3 标准比浊管

用硫酸钡比浊管（0.5麦氏比浊标准），标定接种菌液浓度。

比浊管制备方法如下：（1）0.048mol/L BaCl2，（1.175% w/v BaCl2·2H2O）0.5ml，加到99.5ml的0.18 mol/L（0.36N）H2SO4（1％v/v）溶液中，制成比浊管；（2）用光径为1cm的分光光度计测定光吸收来标定比浊管。

0.5麦氏标准比浊管在625nm波长的吸收光度应为0.08-0.1；（3）选管径与制备菌液试管相同的螺口试管，每管分装4－6ml；（4）将试管帽拧紧，放室温暗处保存；（5）用前，将比浊管在旋转振荡器上混匀。

如出现大颗粒，应更换；（6）每个月更换比浊管或复检比浊管的浊度。

5 操作步骤

5.1 制备接种菌液

5.1.1 增菌法 步骤如下：（1）选琼脂平板上形态相同的菌落至少4－5个，用接种环挑其顶部，移至4－5ml肉汤或大豆酪蛋白消化液中；（2）置35℃培养至菌液浓度达到或超过比浊管浓度（一般需2－6小时），浓度约1－2×108CFU/ml；（3）用生理盐水或肉汤校正菌液浓度，与比浊管相同。

可用光电比浊。

目测比浊须在适当光照下以黑色线条为反衬。

5.1.2 直接菌悬液法 步骤如下：（1）做常规药敏试验，可直接用过夜培养的菌落（必须用无选择性培养基平板，如普通琼脂培养基）在盐水或肉汤中制备接种菌液。

菌液浓度调至0.5麦氏管；(2)此法适用于在肉汤培养基中生长不好的细菌如嗜血杆菌、淋病奈瑟氏菌和链球菌及葡萄球菌的甲氧苯青霉素或苯唑青霉素的耐药试验；（3）当用此法做复方磺胺药的试验时，从平板上直接挑菌落时会携带相当量的拮抗剂，造成敏感菌株的抑菌环内出现轻微的生长菌膜。

5.2 接种平板 步骤如下：（1）校正的菌液须在15分钟内使用。

用一无菌棉试子蘸取菌液并在上端管壁旋转挤压几次，去掉过多的菌液；（2）用试子涂布整个琼脂平板表面，反复涂布几次，每次将平皿旋转60度，保证涂布均匀。

（3）将平皿盖打开3－5分钟，使培养基表面的水份吸收掉。

然后贴药敏纸片；（4）注意：避免用过浓的菌液，禁用未经稀释菌或其他不标准菌液接种平板。

5.3 贴纸片 （1）接种平板后，贴上药敏纸片。

用镊子或针尖压一下纸片使其与培养基表面贴牢。

纸片要贴得均匀，纸片与纸片中心距离不得小于24mm。

原则上，直径150mm得平板贴12张纸片，直径100mm平板贴5张纸片。

纸片贴后不应再移动，因为有些药物会立即扩散；（2）贴上纸片15分钟内，须把平板倒放在35℃恒温箱中。

因为抑菌环解释标准是在普通环境中标定的，所以除嗜血杆菌和淋病奈瑟氏菌外，平板不可放在高CO2的环境中。

CO2与某些因素作用可使抑菌环增大。

5.4 读取结果 （1）经16－18小时培养后，观察结果。

菌液浓度适合且涂得好，抑菌环规则，细菌呈融合生长。

如果出现单个菌落，说明接种量小，需重做试验，测量抑菌环直径须包含纸片直径：手持平皿从背面目测检查每快平板，借反射光（黑色无放光背景），用卡尺、普通尺或特制的模板量取抑菌环直径，单位为毫米。

培养基中如果加了血液，须打开平皿盖，借反射光，从正面量抑菌环。

如果是葡萄球菌或肠球菌，须培养24小时后，经投射光检查苯唑青霉素和万古霉素的抑菌环内有无耐药菌株的生长。

抑菌环内有任何生长的表现都表明是耐药菌株。

（2）肉眼见不到细菌明显生长的区域为抑菌环边缘，有很难辨认的细小菌落不算。

如抑菌环内有大量细菌生长，须再移植出来，重新鉴定，重新做药敏试验。

变形菌在某些抗菌药物纸片周围可弥漫生长到抑菌的区域内，当抑菌环边缘清楚，弥漫生长不算。

甲氧苄氨嘧啶和磺胺药的拮抗剂会支持细菌生长，因而测这类药时可忽略轻微生长（80％以上受抑制），以浓密生长的区域作为抑菌环的界限。

用加血的培养基测链球菌，测量抑菌环时不包括溶血环。

（3）参照表2的标准对抑菌环的大小作出解释，以敏感、中介或耐药的形式解释结果。

6 娇嫩细菌

Mueller-Hinton培养基只适用于快速生长的细菌，一般不适于测定娇嫩细菌。

娇嫩细菌的药敏试验如果要用纸片法做，培养基、质量控制方法、解释标准都须做修改以适合每种细菌。

以下介绍的纸片方法用于流感嗜血杆菌，淋病奈瑟氏菌和肺炎链球菌等娇嫩细菌，结果是准确的。

其他细菌须用稀释法测定。

厌氧菌不能用纸片扩散法测定抗菌药物敏感性。

6.1 嗜血杆菌

6.1.1 培养基 纸片扩散法试验适用的培养基称为：嗜血杆菌试验培养基（HTM），配方如下：（1）Mueller-Hinton琼脂；（2）15μg/mlNAD；（3）15μg/ml牛血红素；（4）5μg/ml酵母粉；（5）pH7.2-7.4；配制HTM，先配制血红素贮存液：50mg血红素加到100ml 0.01M热NaOH液中，搅拌至粉末完全融解。

此贮存液30ml加入到1000mlM-H琼脂中，再加入5g酵母粉。

高压灭菌，冷却后，加入3mlNAD贮存液（50mgNAD溶于10ml蒸馏水，过滤除菌）。

不能用巧克力M-H琼脂做嗜血杆菌的药敏试验。

6.1.2 操作步骤 用过夜培养的巧克力平板上的菌落制备接种菌液，操作如下：（1）直接用过夜培养的巧克力平板上的菌落在M-H肉汤或生理盐水中调制菌悬液，用光度仪与0.5麦氏比浊管比浊，校正浓度。

合格的菌液浓度为：1－4×108CFU/ml。

制备菌液应特别注意，菌液浓度过高可导致出现对某些β－内酰胺类药物的假耐药结果，特别是某些产β－内酰胺酶的流感嗜血杆菌。

菌液须在15分钟内使用。

（2）其他步骤按5.2操作，不同处在于：直径150mm平板至多贴9张纸片。

（3）平板放5－7％CO2环境，35℃过夜孵育16－18小时，测量抑菌环直径。

6.1.3 抑菌环解释标准 嗜血杆菌应测的药物浓度见表1A，按表2A列出的抑菌环解释标准判定结果。

除此之外无需测定其他药物。

6.2 淋病奈瑟氏菌

6.2.1 培养基 测定淋病奈瑟氏菌的标准培养基是加有1％添加剂的GC琼脂，不必补充其他添加剂，也不能用强化的巧克力琼脂。

6.2.2 操作步骤 （1）直接用过夜培养的巧克力平板上的菌液在M-H肉汤或生理盐水中调至菌悬液，用光度仪与0.5麦氏比浊管比浊，校正浓度。

菌液须在15分钟内使用。

（2）其他步骤按5.2操作，不同之处在于：直径150mm平板至多贴9张纸片，100mm平板至多贴4张。

（3）平板放5－7％CO2环境35℃孵育20－24小时后，测量抑菌环直径。

6.2.3 抑菌环解释标准 淋病奈瑟氏菌应测的药物见表1A，按表2B列出的抑菌环解释标准判断结果。

除此之外无需测其他药物。

注：在10U青霉素纸片周围产生的抑菌环≤19mm的菌株，一般均产生β－内酰胺酶。

确认这种由质粒决定的耐药性菌株，应当做β－内酰胺酶试验。

质粒决定的对四环素耐药的菌株，抑菌环直径≤19mm（30μg四环素纸片）。

此外，由染色体决定的对青霉素和四环素耐药的菌株所产生的抑菌环较大，解释标准见表2B。

6.3 肺炎链球菌和其他链球菌

6.3.1 培养基 用加5％脱纤维羊血的M-H琼脂做肺炎链球菌和其他链球菌的药敏试验。

6.3.2 操作步骤 （1）直接用过夜培养的血平板上的菌落在M-H肉汤或生理盐水中调制菌悬液，用光度仪与0.5麦氏比浊管比浊，校正浓度。

菌液须在15分钟内使用。

（2）其他步骤按5.2操作，不同处在于：直径150mm平板至多贴9张纸片，100mm平板至多贴4张。

（3）平板放5％CO2环境35℃孵育20－24小时后，测量抑菌环直径。

6.3.3 抑菌环解释标准 肺炎链球菌和其他链球菌应测的药物见表1A，按表2C列出的抑菌环解释标准判定结果。

注：对青霉素敏感的菌株，苯唑西林抑菌环直径≥20mm。

耐药和相对耐药的菌株抑菌环直径≤19mm，不能报告对青霉素耐药或中度耐药，须测MIC。

苯唑西林药敏结果只能推测肺炎链球菌对青霉素的药敏，不能推测其他链球菌对青霉素的药敏。

从无菌部位（如脑脊液、血液、骨髓等）分离的草绿色链球菌须测青霉素MIC。

草绿色链球菌的青霉素药敏试验不能用纸片法。

6.4 甲氧苯青霉素耐药的葡萄球菌 仍有不少实验室在检测MRS时会遇到问题，为了更好检出这种菌株，需了解以下几点：（1）用苯唑西林纸片而不是甲氧西林或乙氧西林。

因此，用1μg苯唑西林纸片检测甲氧西林/苯唑西林的耐药性。

（2）直接用菌悬液法（5.1.2）接种。

（3）检测MRS必须在35℃孵育满24小时（而不是16－18小时）。

（4）借透射光仔细检查苯唑西林纸片周围抑菌环内有无细小菌落或轻微弥漫生长。

（5）MRS通常对多种抗生素耐药，包括β－内酰胺类、氨基糖苷类、大环内脂类、氯霉素类和四环素类。

了解是否多重耐药有助于推测对甲氧西林耐药性。

（6）如果纸片法结果有疑问，需以筛选试验验证。

（7）甲氧西林耐药金黄色葡萄球菌（MRSA）和甲氧西林耐药凝固酶阴性葡萄球菌对所有头孢菌素类和β－内酰胺类如阿莫西林/棒酸、阿莫西林/舒巴坦和依米配能耐药，无论体外试验结果如何。

因为，至今的文献报道，β－内酰胺类药物治疗甲氧西林耐药的感染效果很差，几乎没有治疗成功的资料。

6.5 耐药肠球菌

6.5.1 青霉素/氨苄西林药敏试验 肠球菌对青霉素和氨苄西林耐药系因为产生低亲和力的青霉素结合蛋白（PBPs），个别菌株是由于产生β－内酰胺酶。

纸片法药敏试验可准确测定PBPs改变的菌株，但对产β－内酰胺酶的菌株结果不可靠。

此类菌株应测β－内酰胺酶。

6.5.2 万古霉素药敏试验 肠球菌的纸片法万古霉素药敏试验，平板必须孵育24小时（而不是16－18小时），借投射光仔细检查抑菌环内有无小菌落或弥漫生长。

纸片法结果为中介度时应测MIC.

6.5.3 氨基糖苷类高水平耐药试验 对氨基糖苷类药物高水平耐药，可提示不能用青霉素或粘肽类与氨基糖苷类联合用药治疗肠球菌的感染。

用高浓度庆大霉素（120μg）和链霉素（300μg）纸片筛选这类耐药菌株。

无抑菌环为耐药，抑菌环≥10mm为非高水平耐药。

抑菌环在7－9mm之间再用稀释法筛选试验测定。

特殊高浓度纸片的质控见表3。

不必测其他氨基糖苷类药物，因为没有比庆大霉素或链霉素更强的同类药。

6.6 测定产超广谱β－内酰胺酶的革兰氏阳性杆菌 超广谱β－内酰胺酶（ESBLs）是新认识的一类由质粒介导的β－内酰胺酶，如TEM-1、TEM-2、SHV-1。

ESBLS导致肺炎克雷白氏菌、产酸克雷白氏菌、大肠埃希氏菌和另外几种肠杆菌出现对头孢三嗪、头孢他啶、氨曲南和广谱青霉素类及结构相关的β－内酰胺类药物的耐药。

某些ESBLs导致高水平耐药，须用纸片法检测。

另有低水平耐药株或只能用某个β－内酰胺类药才能测出来。

这类菌株的MIC达不到NCCLS规定的耐药分界点，但临床治疗无效。

克雷白氏菌和大肠埃希氏菌的临床分离株如果对博拿霉素、头孢他啶、氨曲南、头孢胺噻肟或头孢三嗪的抑菌环减小，提示具有ESBL。

细菌产生ESBL时，加入棒酸，抑菌环增大。

ESBL测定的可靠方法尚在研究中。

目前可参考表1和表4。

7 β－内酰胺酶试验

7.1 目的 对嗜血杆菌、淋病奈瑟氏菌和卡他莫拉氏菌，快速β－内酰胺酶试验比纸片法药敏试验的结果快。

对产β－内酰胺酶的肠球菌，这是唯一可靠方法。

β－内酰胺酶试验阳性可推测：（1）淋病奈瑟氏菌、嗜血杆菌、卡他布兰汉氏菌对青霉素、氨苄青霉素和羟氨苄青霉素的耐药；（2）葡萄球菌对青霉素及氨基、羧基和酰尿基青霉素类药物的耐药性。